# 异种移植
将多重基因编辑猪的器官移植给人类，以解决供体器官的长期短缺问题，目前正从同情用药的扩大准入案例迈向FDA批准的临床试验。
Source: https://cn.bioecon.ru/technology/xenotransplantation/
Updated: 2026-08-18
## 概述与价值链
标记：[EC：转基因生物指令2001/18/EC与ATMP法规 | OECD：bio-pharma | 监管机构：FDA（美国）、EMA（欧盟）、NMPA（中国）]
异种移植是将活体器官、组织或细胞从一个物种移植到另一个物种——具体而言，是将多重基因编辑猪的器官移植给人类——以解决人类供体器官长期短缺的问题，全球每天都有数十名患者在移植等待名单上死亡。CRISPR-Cas9多重基因组编辑技术已将该领域从研究概念推向临床现实：eGenesis公司的主打候选产品EGEN-2784（一种基因工程猪肾）已获FDA临床试验(IND)许可，可针对终末期肾病启动正式临床试验，这建立在其正在进行的扩大准入同情用药项目基础之上。联合治疗公司（United Therapeutics）经10个基因编辑的UHeart已获FDA批准，可推进EXPRESS临床试验——一项针对猪心异种移植的I/II/III期自适应设计。在中国，成都的中科奥格生物科技公司与华中科技大学同济医学院附属同济医院合作，已使一只基因编辑猪肾在非人灵长类受体体内功能维持超过600天，且所有肾功能指标均报告正常。这些项目共同面临的工程挑战是同时克服多种截然不同的排斥机制：由人体抗体针对猪细胞表面糖类引发的超急性排斥（通过敲除GGTA1、CMAH及B4GALNT2糖基合成基因解决）、急性血管排斥及凝血不相容（通过添加人凝血调节基因THBD及PROCR解决）、细胞免疫应答（通过人补体调节蛋白CD46/CD55/CD59及耐受分子HLA-E/CD47阻断），以及猪内源性逆转录病毒（PERV）的生物安全风险——如今CRISPR-Cas9已可使供体基因组中的所有拷贝失活。
异种移植的关键方向：
1. **多重糖基敲除：** 消除引发人体抗体即时超急性排斥的猪特异性糖抗原（α-Gal及相关糖基）。
2. **人类转基因整合：** 向猪基因组添加人补体调节、凝血调节及免疫耐受基因，使器官被人体免疫及凝血系统识别为"自身"。
3. **PERV灭活：** 利用CRISPR-Cas9使供体细胞基因组中每一份猪内源性逆转录病毒拷贝失活，消除跨物种病毒传播风险。
4. **指定无病原体（DPF）饲养：** 在密闭、受监控的屏障设施中饲养供体猪，确保移植时器官不携带人畜共患病原体。
### 行业价值链
```
[CRISPR设计与基因组工程] ──> [核移植（SCNT）] ──> [基因编辑猪饲养]
│ │ │
（载体、细胞系） （胚胎、代孕母体） （无菌DPF条件）
│
[人体移植] <──── [器官获取与灌注] <─────────────────────────────────┘
```
### 价值链层级
| 层级 | 描述 | 关键输入/输出 |
|:---|:---|:---|
| **1. 基因编辑** | 设计CRISPR表达盒，多重敲除猪糖基基因并将保护性人类转基因整合入成纤维细胞。 | **输入：** 猪原代成纤维细胞、CRISPR-Cas9系统。
**输出：** 具有10-60+编辑位点的基因稳定细胞系。 |
| **2. 克隆与胚胎（SCNT）** | 体细胞核移植：将编辑后成纤维细胞的细胞核转移至去核猪卵母细胞以形成胚胎。 | **输入：** 编辑后的成纤维细胞、猪卵母细胞。
**输出：** 重构克隆胚胎。 |
| **3. 妊娠** | 将胚胎转移至代孕母猪体内，无菌剖腹产以排除产道感染。 | **输入：** 胚胎材料、代孕母猪。
**输出：** 新生无病原体克隆仔猪。 |
| **4. DPF饲养** | 在严格隔离、空气过滤的指定无病原体（DPF）屏障设施中将动物饲养至6-12月龄。 | **输入：** 新生仔猪、无菌饲料、DPF围栏。
**输出：** 无人畜共患病原体的健康供体猪。 |
| **5. 器官获取** | 在GMP手术室摘取肾脏、心脏或肝脏，立即冲洗血管并连接体外灌注。 | **输入：** 成年供体猪、灌注液。
**输出：** 生命支持灌注装置上存活的体外器官。 |
| **6. 移植** | 将器官植入人体受者，施用靶向免疫抑制并进行终身PCR监测。 | **输入：** 受体患者、已处理的器官、免疫抑制剂。
**输出：** 受者器官功能恢复。 |
该行业的跨领域技术：
- **多重基因组编辑：** 同时向单一细胞系引入数十项基因改变，需要高保真Cas核酸酶及碱基编辑器以避免染色体易位及脱靶突变。
- **指定无病原体（DPF）屏障技术：** 采用正压通风、H14级HEPA过滤、废水消毒及高压灭菌饲料的封闭式猪场设施，动物每月针对30余种猪病原体进行检测。
- **共刺激阻断免疫抑制：** 新一代单克隆抗体（如替戈普鲁巴特等抗CD40/抗CD40L药物），选择性阻断T细胞和B细胞的共刺激激活通路，在不完全抑制人体免疫系统的情况下防止异种移植物排斥。
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## 美国
美国是将异种移植推向临床应用的公认全球领导者，已完成史上首例在活体患者身上进行的成功异种移植手术。
### FDA批准的临床试验、首例人体移植、扩大准入项目
- **eGenesis：** 其基因工程猪肾EGEN-2784已获FDA临床试验(IND)许可，可针对终末期肾病启动正式临床试验，这建立在其正在进行的扩大准入同情用药项目（已有患者更新报告）基础之上。
- **Revivicor（联合治疗公司）：** 其经10个基因编辑的UHeart已获FDA批准，可推进EXPRESS临床试验——一项针对猪心异种移植的自适应I/II/III期设计，此前已在FDA扩大准入下完成史上首例活体患者猪心移植。
- **Miromatrix Medical（联合治疗公司旗下企业）：** 其miroliverELAP——一种由脱细胞猪肝基质经人类细胞再细胞化构建的生物工程体外肝脏支持装置——已获FDA RMAT（再生医学高级疗法）认定。
- **Xenotherapeutics：** 正在开展一项FDA监管的临床试验，评估猪皮异种移植对混合深度烧伤创面完全愈合的效果。
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## 中国
中国正快速缩小与美国的差距，凭借其庞大的动物克隆能力，推进非人灵长类异种移植研究向长期存活基准迈进。
### 大规模猪克隆、灵长类存活里程碑、基因编辑供体平台
- **中科奥格生物科技（成都）：** 与华中科技大学同济医学院附属同济医院合作，已使一只基因编辑猪肾在非人灵长类受体体内功能维持超过600天，且所有肾功能指标均报告正常——达到国际领先的存活水平——这建立在公司自有的基因编辑猪构建及超洁净繁育一体化平台之上。
- **克隆规模：** 中国研究人员运用自动化机器人显微操作系统，能够每日克隆大量基因编辑猪胚胎，为国内项目提供显著的产能优势。
- **临床转化路径：** 中国团队正推进从灵长类实验到临床试验的路径，针对终末期肾病及1型糖尿病开展肾脏及胰岛细胞异种移植研究。
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## 欧盟
欧盟以其特有的谨慎态度对待异种移植，在快速临床转化之前优先开展深入的灵长类临床前相容性研究及严格的伦理监督。
### 灵长类临床前研究、ATMP监管框架、生物伦理监督
- **慕尼黑大学联盟（路德维希-马克西米利安大学，由Eckhard Wolf领导）：** 开展长期异种移植临床前研究，包括对早期人体抗猪异种移植物免疫应答的深度表型分析，以及确定供体猪成功实现细胞、组织及器官异种移植所必需的基因修饰研究。
- **EMA监管立场：** 将异种器官视为先进治疗药品（ATMP），要求提供详尽的临床前安全性证据，特别强调跨物种感染风险，并要求对受者及其密切接触者进行终身临床监测。
- **伦理监督：** 活跃的生物伦理委员会对人体试验施加严格限制，要求每一步都有严谨的论证，并最大限度减少供体动物的痛苦。
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## 领先企业与科研机构
| 企业/机构 | 国家 | 主要产品/平台 | 技术特点 | 2026年状态 |
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| **eGenesis** | 🇺🇸 美国 | 工程猪肾*EGEN-2784* | 多重CRISPR编辑，PERV完全灭活 | 临床试验 |
| **Revivicor** | 🇺🇸 美国 | *UHeart*/*UKidney*（10基因编辑猪） | FDA批准的EXPRESS自适应临床试验 | 临床试验 |
| **Miromatrix Medical** | 🇺🇸 美国 | 生物工程肝脏支持*miroliverELAP* | 脱细胞猪基质+人类细胞再细胞化 | 临床试验 |
| **Xenotherapeutics** | 🇺🇸 美国 | 用于烧伤的猪皮异种移植物 | FDA监管的烧伤创面愈合临床试验 | 临床试验 |
| **中科奥格生物科技** | 🇨🇳 中国 | 基因编辑猪肾异种移植 | 灵长类存活超600天，超洁净繁育平台 | 研发阶段 |
| **慕尼黑大学** | 🇩🇪 德国 | 基因修饰供体猪研究 | 灵长类异种移植临床前免疫学 | 研发阶段 |
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## 技术栈与创新发展
异种移植行业依赖以下技术栈：
1. **体细胞核移植（SCNT）：**
- 从深度基因编辑的细胞系产生存活克隆猪后代的唯一方法：携带编辑位点的成纤维细胞核显微注射入去核卵母细胞，经电融合、化学激活、培养至囊胚阶段后植入代孕母猪体内。
2. **猪内源性逆转录病毒（PERV）灭活：**
- 利用CRISPR-Cas9同时切割并破坏整合于供体猪基因组中每一份PERV *pol*基因拷贝，消除复制风险，使器官对免疫抑制状态下的人类受者安全。
3. **常温体外器官灌注：**
- 与导致组织缺血损伤的传统冰上储存不同，异种移植器官连接至移动式器官护理系统，持续循环富含营养物质及抗炎激素的温暖含氧供体血液，最大限度减少运输期间的血管损伤。
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## 价值链与生产流程
### 异种移植供体猪器官生产与准备工业流程（GMP/DPF）
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│ 1. 猪成纤维细胞CRISPR │ ───> │ 2. 克隆（SCNT）与 │
│ 编辑 │ │ 胚胎移植 │
└───────────────────────────┘ └───────────────────────────┘
│
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┌───────────────────────────┐ ┌───────────────────────────┐
│ 4. 在无菌DPF区域饲养猪 │ <─── │ 3. 无菌剖腹产 │
└───────────────────────────┘ └───────────────────────────┘
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┌───────────────────────────┐ ┌───────────────────────────┐
│ 5. GMP手术室器官获取 │ ───> │ 6. 体外灌注与临床送达 │
└───────────────────────────┘ └───────────────────────────┘
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#### 阶段1：构建基因工程猪细胞系
从新生仔猪耳部分离原代成纤维细胞，用靶向三个关键猪糖基合成基因（GGTA1、CMAH、B4GALNT2）的CRISPR-Cas9质粒或核糖核蛋白复合物进行转染，同时通过脂质转染或电穿孔导入携带补体基因（CD46、CD55、CD59）及凝血基因（THBD、PROCR）的人类DNA构建体。挑选克隆，进行全基因组测序以确认所有预期编辑且无非预期DNA断裂，建立主细胞库。
#### 阶段2：体细胞核移植（SCNT）
卵母细胞在体外成熟，在显微操作下去核，随后在卵周隙注入一个已编辑的成纤维细胞；电融合及化学激活形成重构胚胎，经培养后手术转移至代孕母猪的输卵管。
#### 阶段3：无菌剖腹产
妊娠第113天，在专用DPF手术间以严格无菌条件对代孕母猪实施剖腹产；仔猪立即转入独立无菌保育箱，完全阻断产道病原体的传播。
#### 阶段4：在DPF屏障模块中饲养猪只
仔猪先以灭菌代乳品饲养，随后转为高压灭菌颗粒饲料及净化水，饲养模块内持续保持经HEPA过滤的层流空气，工作人员仅通过淋浴气闸进入；每30天通过PCR检测血液及拭子样本中的猪巨细胞病毒、淋巴组织向性疱疹病毒等病原体，直至动物达到供体规格（约80-100公斤，6-10月龄）。
#### 阶段5：供体器官获取
将准备好的动物送入洁净GMP手术室并施以麻醉，游离肾脏、肝脏或心脏；摘取器官前用含人凝血酶拮抗剂的冰冷保存液冲洗血管系统。
#### 阶段6：体外连接、保存与物流
获取的器官经称重、检查后连接至无菌器官护理系统灌注装置，该装置以37°C、60-80毫米汞柱灌注压持续循环经修饰的人类红细胞、电解质、激素及抗生素，运输期间（最长12小时）持续监测pH值、乳酸水平及器官血流，直至送达受者所在临床机构。